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非典是怎么消失的,非典在2003年6月全部莫名消失的原因

更新时间:2025-05-11 10:26:11   作者:网友投稿   来源:网友投稿点击:

非典在2003年6月全部莫名消失的原因

病毒数代自动凋亡机制

有人说:非典病毒是台湾生化武器的无意泄露,非典病毒加入了基因凋亡机制,只要在人群中传播后,非典病毒6个月自动死亡。所以非典在2003年6月全部莫名消失了。包证了自身的安全,不至于最后传染危害到自己。而且象炸弹爆炸后,没有后继的影响。

SARS病毒(SARS-CoV)2003年间引发了严重的SARS疫情,在2003年6月就完全从自然界和人群中消失。

这本书说SARS是自然消失的,其实都是错的。SARS也是实验室泄露的人工病毒。为什么会自己消失。

答案就是人家在制造SARS病毒的时候,就加入了凋亡机制。

书里也发现了病毒凋亡机制的原理。发现了ORF 1A基因段最终形成一个终止密码子,会使病毒复制到某种非结构蛋白时终止,从而造成SARS病毒复制重要一环缺失,最终病毒全部死亡。

因为SARS病毒是非结构蛋白3被动了手脚,而新冠与之同源,我们看看 新冠的非结构蛋白3(NSP3) nsp3多域在冠状病毒感染中发挥多种作用;它从多蛋白中释放nsp1、nsp2及其自身,并与其他病毒nsp以及RNA结合形成复制/转录复合物。Nsp3作用于宿主蛋白翻译后修饰,以拮抗宿主的先天免疫反应(。

NSP3的部分已解析出的结构亚基,其中最大的结构为木瓜样蛋白酶(PLpro)(X-射线衍射)

Nsp3还可能与宿主蛋白(如RCHY1)相互作用以促进病毒的存活。

它可以作为支架蛋白与其自身相互作用并与其他病毒 nsp 或宿主蛋白结合。 NSP3包含SARS-CoV-2木瓜样蛋白酶(PLpro),其去糖化活性似乎是其多种蛋白水解功能中最主要的。 我们发现,在宿主细胞中,NSP3本身也发生了变化,即通过结构域3Ecto的N-糖基化发生了变化。

Nsp3在冠状病毒生命周期中发挥着重要作用;对他动手确实能让病毒凋亡。

4、如何让 SARS 病毒数代后 自动凋亡

要让SARS病毒在数代后自动凋亡,可以通过基因编辑CRISPR-Cas系统设计一种条件性致死机制。

原理:在病毒基因组中插入CRISPR-Cas系统,设计CRISPR-Cas系统在SARS病毒复制一定次数后激活,切割病毒基因组,使切割后的NHEJ基因段最终形成一个终止密码子,会使病毒复制到某种关键的非结构蛋白3时终止,从而造成非结构蛋白3失活,导致SARS病毒复制重要一环缺失,最终病毒全部死亡。使其无法继续复制。

过程:人工设计一段DNA序列,使其在每次复制时被修饰(如甲基化),并在累积到一定次数后触发CRISPR-Cas系统,需要考虑多个因素。

首先,选择一个已知会因复制而被甲基化的DNA序列,例如某些细菌的质粒或噬菌体中的重复序列。这些序列通常含有特定的甲基化位点,如CpG二核苷酸。其次,设计一段包含这些甲基化位点的DNA片段,并将其插入到目标生物的基因组中。随着复制次数的增加,这些位点会被逐渐甲基化。

最后,利用CRISPR-Cas系统的特定性,设计一条指导RNA(gRNA),其序列与甲基化后的DNA序列高度互补。当甲基化累积到一定程度,gRNA能够识别并引导Cas酶切割特定的DNA位点,从而触发CRISPR-Cas系统。这种设计需要精确计算甲基化累积的阈值,以确保在合适的复制次数后激活CRISPR-Cas。

通过这些策略,可以实现病毒在数代甚至数十代后自动凋亡,从而控制病毒的传播。

5、SARS病毒还加入了自动病毒伤害减少机制。

上图可以看出,2022年11月——2003年7月,SARS病毒各变种在丢失ORF8的 29-NT序列基因,所以病毒的毒性不断在降低。直到ORF8的 29-NT序列基因 丢光。各个变异的病毒虽然ORF8基因 29-NT丢失速度不一样,但是最后还是会慢慢全部丢失,但是对复制没有影响,但是传染力毒性大大降低。ORF8基因 29-NT的丢失导致症状更轻。

我们可以通过基因编辑CRISPR-Cas系统设计一种条件性机制。让病毒随着时间进展,毒性下降。

原理:在病毒基因组中插入CRISPR-Cas系统,设计CRISPR-Cas系统在SARS病毒复制一定次数后激活,切割病毒ORF8的 29-NT序列基因组,会使病毒复制到ORF8某段基因时终止,从而造成ORF8丢失 29-NT序列基因。导致病毒伤害减少 ,症状更轻

过程:人工设计一段DNA序列,使其在每次复制时被修饰(如甲基化),并在累积到一定次数后触发CRISPR-Cas系统,需要考虑多个因素。 首先,选择一个已知会因复制而被甲基化的DNA序列,例如某些细菌的质粒或噬菌体中的重复序列。这些序列通常含有特定的甲基化位点,如CpG二核苷酸。其次,设计一段包含这些甲基化位点的DNA片段,并将其插入到目标生物的基因组中。随着复制次数的增加,这些位点会被逐渐甲基化。

最后,利用CRISPR-Cas系统的特定性,设计一条指导RNA(gRNA),其序列与甲基化后的DNA序列高度互补。当甲基化累积到一定程度,gRNA能够识别并引导Cas酶切割特定的DNA位点,从而触发CRISPR-Cas系统。这种设计需要精确计算甲基化累积的阈值,以确保在合适的复制次数后激活CRISPR-Cas。

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